ประสิทธิภาพของชุดตรวจอิมมูโนโครมาโตกราฟีชนิดไหลในแนวราบในการตรวจหาแอนติบอดีต่อโรคบรูเซลโลซิสในแพะ
คำสำคัญ:
โรคบรูเซลโลซิส, อิมมูโนโครมาโตกราฟีชนิดไหลในแนวราบ, การตรวจหาแอนติบอดี, แพะบทคัดย่อ
ปัจจุบันมีผู้นำเข้าชุดตรวจโรคบรูเซลโลซิสที่อาศัยหลักการอิมมูโนโครมาโตกราฟีชนิดไหลในแนวราบมาในประเทศไทย ชุดทดสอบดังกล่าวมีขั้นตอนที่ไม่ยุ่งยากและทราบผลได้รวดเร็ว จึงอาจเป็นเครื่องมือที่เอื้อประโยชน์ในการซื้อ-ขายแพะ โดยไม่ก่อให้เกิดการแพร่กระจายโรค อย่างไรก็ตามชุดทดสอบดังกล่าวยังไม่ถูกประเมินประสิทธิภาพในการวินิจฉัย การศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินค่าความไว ความจำเพาะ และความสอดคล้องในการวินิจฉัยของชุดทดสอบเชิงพาณิชย์ที่ใช้เทคนิคดังกล่าวในการตรวจวินิจฉัยโรคบรูเซลโลซิสในแพะ โดยเปรียบเทียบกับผลการตรวจจากห้องปฏิบัติการที่เป็นวิธีมาตรฐาน การศึกษานี้ได้ทำการวิเคราะห์ตัวอย่างซีรั่มของแพะจำนวน 275 ตัวอย่าง โดยใช้ชุดทดสอบอิมมูโนโครมาโตกราฟีชนิดไหลในแนวราบเชิงพาณิชย์ และใช้ผลการตรวจด้วยวิธี Rose Bengal test ร่วมกับ microtiter plate agglutination test จากศูนย์ชันสูตรโรคสัตว์กำแพงแสน คณะสัตวแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ เป็นวิธีอ้างอิง เพื่อประเมินประสิทธิภาพของชุดทดสอบ ผลการวิเคราะห์พบว่าชุดทดสอบเชิงพาณิชย์ดังกล่าวมีค่าความไวและค่าความจำเพาะอยู่ที่ร้อยละ 86.10 และร้อยละ 90.91 ตามลำดับ ค่าสัมประสิทธิ์โคเฮนแคปปาอยู่ที่ 0.731 ซึ่งถือว่าชุดตรวจให้ผลสอดคล้องอย่างมากกับผลทดสอบทางห้องปฏิบัติการ ดังนั้นชุดทดสอบเชิงพาณิชย์นี้สามารถนำไปใช้เป็นเครื่องมือคัดกรองเบื้องต้นสำหรับการตรวจหาโรคบรูเซลโลซิสในแพะได้ โดยเฉพาะอย่างยิ่งในสถานการณ์ที่จำเป็นต้องทราบผลอย่างเร่งด่วน
เอกสารอ้างอิง
Abdoel T, Dias IT, Cardoso R, Smits HL. Simple and rapid field tests for brucellosis in livestock. Vet Microbiol. 2008;130:312-9.
Ahmed WA, Majeed SA, Ameer AHA, Mahmmod ND, Saeed NI, Hanaa LY. Sensitivity and specificity of various serological tests for detection of Brucella spp. infection in goat and sheep males. Adv Microbiol. 2016;6:98-103.
Bodenham RF, Mazeri S, Cleaveland S, Crump JA, Fasina FO, De Glanville WA, et al. Latent class evaluation of the performance of serological tests for exposure to Brucella spp. in cattle, sheep, and goats in Tanzania. PLoS Negl Trop Dis. 2021;15(8):e0009630.
Bunleupongphan S, Pinyopummin A, Kornkaewrat K, Phavaphutanon J, Chumsing A, Leartsang W, et al. Evaluation of 2 mercaptoethanol-microtiter plate agglutination test (2ME-MPAT) for the diagnosis of brucellosis in ruminants (in Thai). Proceeding of the 52nd Kasetsart University Annual Conference: Animal, Veterinary Medicine. Bangkok: Kasetsart University; 2014. p. 327-31.
Chenais E, Bagge E, Lambertz ST, Artursson K. Yersinia enterocolitica serotype O:9 cultured from Swedish sheep showing serologically false-positive reactions for Brucella melitensis. Infect Ecol Epidemiol. 2012;2(1):19027.
Colombo M, Bezinge L, Tapi AR, Shih CJ, de Mello AJ, Richards DA. Real-time, smartphone-based processing of lateral flow assays for early failure detection and rapid testing workflows. Sens Diagn. 2023;2(1):100-10.
Dadar M, Tiwari R, Sharun K, Dhama K. Importance of brucellosis control programs of livestock on the improvement of one health. Vet Q. 2021;41(1):137-51.
Di Nardo F, Chiarello M, Cavalera S, Baggiani C, Anfossi L. Ten years of lateral flow immunoassay technique applications: Trends, challenges and future perspectives. Sensors. 2021;21(15):5185.
Ghanbari MK, Gorji HA, Behzadifar M, Sanee N, Mehedi N, Bragazzi NL. One health approach to tackle brucellosis: a systematic review. Trop Med Health. 2020;48:1-10.
Gusi AM, Bertu WJ, Jesús de Miguel M, Dieste-Pérez L, Smits HL, Ocholi RA, et al. Comparative performance of lateral flow immunochromatography, iELISA and Rose Bengal tests for the diagnosis of cattle, sheep, goat and swine brucellosis. PLoS Negl Trop Dis. 2019;13(6):e0007509.
Heireman L, Van Geel P, Musger L, Heylen E, Uyttenbroeck W, Mahieu B. Causes, consequences and management of sample hemolysis in the clinical laboratory. Clin Biochem. 2017;50(18):1317-22.
Hussein AE, Ammar KM. The effect of serum storage factors influencing the reactivity of antibodies in serodiagnostic tests. Kafrelsheikh Vet Med. 2004;2(2):29-42.
Irmak H, Buzgan T, Evirgen O, Akdeniz H, Demiroz AP, Abdoel TH, et al. Use of the Brucella IgM and IgG flow assays in the serodiagnosis of human brucellosis in an area endemic for brucellosis. Am J Trop Med Hyg. 2004;70(6):688-94.
Khan MZ, Zahoor M. An overview of brucellosis in cattle and humans, and its serological and molecular diagnosis in control strategies. Trop Med Infect Dis. 2018;3(2):65.
Khoshnood S, Pakzad R, Koupaei M, Shirani M, Araghi A, Irani GM, et al. Prevalence, diagnosis, and manifestations of brucellosis: A systematic review and meta-analysis. Front Vet Sci. 2022;9:976215.
Khurana SK, Sehrawat A, Tiwari R, Prasad M, Gulati B, Shabbir MZ, et al. Bovine brucellosis–a comprehensive review. Vet Q. 2021;41(1):61-88.
Kim S, Park JK. Development of a test strip reader for a lateral flow membrane-based immunochromatographic assay. Biotechnol Bioprocess Eng. 2004;9:127-31.
Koczula KM, Gallotta A. Lateral Flow Assays. Essays Biochem. 2016;60(1):111-20.
Landis JR, Koch GG. The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 1977;33(1):159-74.
Poester FP, Nielsen K, Samartino LE, Yu WL. Diagnosis of brucellosis. Open Vet Sci J. 2010;4(1):46-60.
Pal M, Kerorsa GB, Desalegn C, Kandi V. Human and animal brucellosis: a comprehensive review of biology, pathogenesis, epidemiology, risk factors, clinical signs, laboratory diagnosis, public health significance, economic importance, prevention and control. Am J Infect Dis. 2020;8(4):118-26.
Quintero AF, Herrera DFD, Alfonso DM, Santana YC, Torres RB, Tamayo LM. Evaluation of two rapid immunochromatographic tests for diagnosis of brucellosis infection in cattle. Open Vet J. 2018;8(3):236-42.
Qureshi KA, Parvez A, Fahmy NA, Abdel Hady BH, Kumar S, Ganguly A, et al. Brucellosis: epidemiology, pathogenesis, diagnosis and treatment-a comprehensive review. Ann Med. 2023;55(2):2295398.
Šerić-Haraćić S, Velić L, Šaljić E, Ćengić B, Tandir F, Hadžimusić N. Agreement among Rose Bengal, complement fixation test, and iELISA in diagnostic discrimination of sheep and goat brucellosis (Brucella melitensis). Acta Vet Eurasia. 2022;48(1):30-4.
Shome R, Kalleshamurthy T, Shome BR, Sahay S, Natesan K, Bambal RG, et al. Lateral flow assay for brucellosis testing in multiple livestock species. J Microbiol Methods. 2018;148:93-6.
Smits HL, Abdoel T, Solera J, Clavijo E, Diaz R. Immunochromatographic Brucella-specific immunoglobulin M and G lateral flow assays for rapid serodiagnosis of human brucellosis. Clin Diagn Lab Immunol. 2003;10(6):1141-6.
Souza PG, Lima PA, Soares Filho PM, Etges RN, Nicolino RR, Viana AG, et al. Analytical performance evaluation of a rapid immunochromatographic test for the diagnosis of bovine brucellosis based on a recombinant BP26 protein. Arq Bras Med Vet Zootec. 2024;76(5):e13158.
Wang Q, Long M, Lv C, Xin S, Han X, Jiang W. Lanthanide-labeled fluorescent-nanoparticle immunochromatographic strips enable rapid and quantitative detection of Escherichia coli O157:H7 in food samples. Food Control. 2020;109:106894.
Weynants V, Tibor A, Denoel PA, Saegerman C, Godfroid J, Thiange P, et al. Infection of cattle with Yersinia enterocolitica O:9, a cause of false positive serological reactions in bovine brucellosis diagnostic tests. Vet Microbiol. 1996;48(1-2):101-12.
World Organisation for Animal Health (WOAH). Chapter 3.1.4. - Brucellosis (Brucella abortus, B. melitensis and B. suis) [Internet]. WOAH. 2022 [cited 2025 Jan 21]. Available from: https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/3.01.04_BRUCELLOSIS.pdf.
Yin D, Ba Q, Wu X, Li H, Shao J, Sun M, et al. A multi-epitope fusion protein-based p-ELISA method for diagnosing bovine and goat brucellosis. Front Vet Sci. 2021;8:708008.
Zhang N, Huang D, Wu W, Liu J, Liang F, Zhou B, et al. Animal brucellosis control or eradication programs worldwide: a systematic review of experiences and lessons learned. Prev Vet Med. 2018;160:105-15.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2026 คณะสัตวแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยมหิดล

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เนื้อหาและข้อมูลในบทความที่ลงตีพิมพ์ในวารสาร Journal of Applied Animal Science ถือเป็นข้อคิดเห็นและความรับผิดชอบของผู้เขียนบทความโดยตรงซึ่งกองบรรณาธิการวารสาร ไม่จำเป็นต้องเห็นด้วย หรือร่วมรับผิดชอบใด ๆ
บทความ ข้อมูล เนื้อหา รูปภาพ ฯลฯ ที่ได้รับการตีพิมพ์ในวารสาร Journal of Applied Animal Science ถือเป็นลิขสิทธิ์ของวารสาร Journal of Applied Animal Science หากบุคคลหรือหน่วยงานใดต้องการนำทั้งหมดหรือส่วนหนึ่งส่วนใดไปเผยแพร่ต่อหรือเพื่อกระทำการใด ๆ จะต้องได้รับอนุญาตเป็นลายลักอักษรจากวารสาร Journal of Applied Animal Science ก่อนเท่านั้น