The Efficiency of UPAC Deep Freezer in the Production of Cryoprecipitate from Regional Blood Centre 9th Phitsanulok, Thai Red Cross Society

เจนจิรา อินสว่าง

ผู้แต่ง

เจนจิรา อินสว่าง

คำสำคัญ:

ไครโอปรีซิพิเตท,, ตู้แช่แข็ง UPAC,, แฟคเตอร์ 8,, ไฟบริโนเจน

บทคัดย่อ

บทนำ
วัตถุประสงค์: เพื่อศึกษาประสิทธิภาพตู้แช่แข็ง Deep freezer eutectic plate ยี่ห้อ The Cool รุ่น DF 160 (UPAC deep
freezer) ในการผลิต Cryoprecipitate (CRYO) จากการวิเคราะห์ผลตรวจคุณภาพ CRYO ที่ผลิตของภาคบริการโลหิต
แห่งชาติที่ 9 จังหวัดพิษณุโลก สภากาชาดไทย เปรียบเทียบกับมาตรฐานของ American Association of Blood Banks (AABB)
วิธีการศึกษา: เป็นการศึกษาเชิงพรรณนาแบบย้อนหลัง จากผลตรวจคุณภาพ CRYO จำนวน 120 ยูนิต ที่ผลิตจากตู้แช่แข็ง
UPAC deep freezer ของภาคบริการโลหิตแห่งชาติที่ 9 จ.พิษณุโลก ระหว่างเดือนเมษายน พ.ศ. 2558 ถึงมีนาคม พ.ศ.2562
ย้อนหลัง 4 ปี โดยการสุ่มตัวอย่าง CRYO ที่ผลิตส่งตรวจคุณภาพที่ฝ่ายควบคุมคุณภาพศูนย์บริการโลหิตแห่งชาติ
สภากาชาดไทยเปรียบเทียบกับเกณฑ์มาตรฐานของ AABB วิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้สถิติเชิงพรรณนา และสถิติ one sample
T-test, independent T-test, ANOVA และ Scheffe’s method กำหนดนัยสำคัญทางสถิติที่ระดับ 0.05
ผลการศึกษา: CRYO ที่ตรวจวัดภายใน 1 เดือนหลังบริจาคโลหิต จำนวน 96 ยูนิต พบค่าปริมาณ FVIII และ fibrinogen ให้
ผลผ่านเกณฑ์มาตรฐานของ AABB เท่ากับร้อยละ 100.00 และ 100.00 ตามลำดับ โดยมีค่าเฉลี่ยและส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน
(พิสัย) เท่ากับ 132.63±20.96 (89.39-204.29) หน่วยต่อยูนิต และ 558.59±179.99 (223.86-958.95) มิลลิกรัมต่อยูนิต ตาม
ลำดับ โดยจากการแบ่งกลุ่มในระหว่างกลุ่มตัวอย่างพบค่าเฉลี่ยปริมาณ FVIII มีค่าแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ ได้แก่
ปริมาตร CRYO มากกว่าหรือเท่ากับ 10 มิลลิลิตร (p<0.001) และหมู่โลหิตระบบ ABO (p= 0.013) ส่วนค่าเฉลี่ยปริมาณ fibrinogen
มีค่าแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ ได้แก่ ปริมาตร CRYO มากกว่าหรือเท่ากับ 10 มิลลิลิตร (p < 0.001) และเพศ
ผู้บริจาค (p =0.001) ส่วนใน CRYO ที่ตรวจวัดภายใน 1 เดือนก่อนหมดอายุ จำนวน 24 ยูนิต พบค่าปริมาณ FVIII ให้ผลผ่าน
เกณฑ์มาตรฐานของ AABB เท่ากับร้อยละ 100.00 โดยมีค่าเฉลี่ยและส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน (พิสัย) เท่ากับ 110.88±17.64
(82.06-154.44) หน่วยต่อยูนิต และพบค่าเฉลี่ยปริมาณ FVIII ตํ่ากว่า CRYO ที่ตรวจวัดภายใน 1 เดือนหลังบริจาคโลหิต อย่าง
มีนัยสำคัญทางสถิติ (p=0.001) แต่ทั้งหมดมีค่าผ่านเกณฑ์มาตรฐาน
สรุป: ตู้แช่แข็ง UPAC deep freezer มีประสิทธิภาพสามารถใช้ในการผลิต CRYO ที่มีคุณภาพไม่ด้อยไป
กว่ามาตรฐานที่กำหนดของปริมาณ FVIII และ fibrinogen ในระดบั สากล อย่างไรก็ตามปริมาณดังกล่าวอาจแตกต่างกันออกไป
เมื่อพิจารณาจากกลุ่มของปัจจัย ได้แก่ ปริมาตร CRYO หมู่โลหิตในระบบ ABO และเพศผู้บริจาคที่อาจมีผลต่อคุณภาพ CRYO
ข้อมูลดังกล่าวอาจใช้เป็นแนวทางในการพัฒนาการผลิตเพื่อให้ได้ CRYO ที่มีคุณภาพตามมาตรฐานสำหรับรักษาผู้ป่วย ซึ่งการใช้ตู้
แช่แข็ง UPAC deep freezer จะช่วยลดต้นทุนการผลิตจากเครื่องมือราคาแพงและใช้พื้นที่น้อยเหมาะกับหน่วยงานที่มีพื้นที่จำกัด
คำสำคัญ: ไครโอปรีซิพิเตท, ตู้แช่แข็ง UPAC, แฟคเตอร์ 8, ไฟบริโนเจน

เอกสารอ้างอิง

1. Brecher ME, Leger RM, Linden IV. Technical manual. 16thed. Bethesda, MD: American Association of Blood
Banks; 2008.
2. Kasper CK. Judith graham pool and the discovery of cryoprecipitate. Hemophilia. 2012;18:833–5.
3. Council of Europe. Guide to the preparation, use and quality assurance of blood components. 14thed.
Strasbourg Cedex: Council of Europe; 2008.
4. Nascimento B, Goodnough LT and Lev JH. Cryoprecipitate therapy. Br J Anaesthesia. 2014;113(6):922–34
5. O’Shaughnessy DF, Atterbury C, Bolton Maggs P, Murphy M, Thomas D, Yates S, et al. Guidelines for the
use of fresh-frozen plasma, cryoprecipitate and cryosupernatant. Br J Haematol. 2004;126:11–28.
6. National Blood Centre, Thai Red Cross Society. Standards for blood banks and transfusion services. 4st ed.
Bangkok: Udom suksa; 2015.
7. Dhingra N. Screening donated blood for transfusion transmissible infections. World Health Organization;
2010. p. 24-31.
8. Sparrow RL, Greening DW, Simpson RJ. A protocol for the preparation of cryoprecipitate and cryodepleted
plasma. Meth Mol Biol. 2011;728:259-65.
9. Bejrachandra S, O’Charoen R, Opartkiattikul N, Siriboonrit U, Kaewkamol K, Sombatnimitsakul S, et al. As
sessment of cryoprecipitate preparation by two freezing techiques: InstaCool freezer and freezer. Thai J
Hematol Transfus Med. 1992;2(3):303-11.
10. Kasper CK, Myhre BA, McDonald JD, Nakasako Y, Feinstein DI. Determinants of factor VIII recovery in cryo
precipitate. Transfu-sion. 1975;15:312-22.
11. Kang EP. An improved thaw-siphon method for the cryoprecipitate preparation. Vox Sang. 1980;38:172-7.
12. Caudill JS, Nichols WL, Plumhoff EA, Schulte SL, Winters JL, Gastineau DA, et al. Comparison of coagulation
factor XIII content and concentration in cryoprecipitate and fresh-frozen plasma. Transfusion. 2009;49:765–70.
13. Bejrachandra S, Chandanayingyong D, Visudhiphan S, Tumliang S, Kaewkamol K, Siribunrit U. Factor VIII,
factor IX and fibrinogen content in cryoprecipitate, fresh plasma and cryoprecipitate-removed plasma.
Southeast Asian J Trop Med Public Health. 1993;24 (Suppl 1):162-4.
14. Cardigan R, Philpot K, Cookson P, Luddington R. Thrombin generation and clot formation in methylene
blue-treated plasma and cryoprecipitate. Transfusion. 2009;49:696–703.
15. Omidkhoda A, Tabatabaei MR, Atarodi K, Karimi K, Froushani AR, Pourfathollan AA. A comparative study
of the effects of temperature, time and factor VIII assay type on factor VIII activity in cryoprecipitate in Iran.
Blood Transfus. 2011;9:394-9.
16. Hoffman M, Koepke JA, Widmann FK. Fibrinogen content of low-volume cryoprecipitate. Transfusion
1987;27:356-8.
17. Bettigole RE, Tourbaf K, Robson EB, Schultz M. The effect of cryoprecipitate volume on factor VIII content.
Transfusion. 1974;14:598-601.
18. Philip J, Kumarage S, Chatterjee T, Kumar S, Mallhi R. The possible advantages of cryoprecipitate prepared
from fresh frozen plasma from blood stored for 24 hours. Lab Med Spring. 2014;45:111-5.
19. Weisert O, Jeremic M. Plasma fibrinogen levels in 1,016 regular blood donors. Vox Sang. 1974;27:176-85.25.
20. Tarallo P, Henny J, Gueguen R, Siest G. Reference limits of plasma fibrinogen. Clin Chem Clin Biochem.
1992;30:745-51.
hscr