การเตรียมความพร้อมเทคนิค Multiplex Real-time RT PCR เพื่อตรวจวินิจฉัยหาเชื้อไวรัสไข้หวัดใหญ่และเชื้อไวรัสอาร์เอสวี (RSV) ที่ระบาดในประเทศไทย
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ที่่มาและความสำคัญ การเตรียมความพร้อมเทคนิค Multiplex Real-time RT PCR เป็นวิธีตรวจวินิจฉัยเชื้อไวรัสไข้หวัดใหญ่และเชื้อไวรัสอาร์เอสวี (RSV) ซึ่งมีบทบาทสำคัญในการระบาดของโรคทางเดินหายใจในประเทศไทย วัตถุประสงค์ การศึกษานี้มีเพื่อเตรียมความพร้อมเทคนิค Multiplex Real-time PCR สำหรับใช้ตรวจวินิจฉัยโรคไวรัสก่อโรคทางเดินหายใจในผู้ติดเชื้อได้อย่างถูกต้อง แม่นยำ และมีประสิทธิภาพสามารถตรวจสอบได้หลายเป้าหมายในเวลาเดียวกัน เป็นการเสริมสร้างขีดความสามารถในการตรวจวินิจฉัยโรคไวรัสก่อโรคทางเดินหายใจของสถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์การแพทย์ทหาร เพื่อสนับสนุนในการสืบสวนการระบาดของโรค และเตรียมความพร้อมในการรับมือกับอุบัติการณ์การระบาดของโรคทางเดินหายใจในทหารและประชาชนที่พักอาศัยอยู่ในพื้นที่เสี่ยง และลดอัตราการสูญเสียของกำลังพลกองทัพบก วิธีการวิจัย กระบวนการวิจัยใช้ตัวอย่างอาร์เอ็นเอที่ตรวจพบสารพันธุกรรมของเชื้อไวรัสก่อโรคไข้หวัดใหญ่ และอาร์เอสวีด้วยข้อมูลผลการตรวจจากวิธี Gold standard (Real-time RT PCR) จำนวน 30 ตัวอย่าง และตัวอย่างที่ตรวจไม่พบสารพันธุกรรมของเชื้อไวรัสก่อโรคทางเดินหายใจดังกล่าว 30 ตัวอย่าง รวมทั้งสิ้นจำนวน 60 ตัวอย่าง นำมาดำเนินการตรวจหาสารพันธุกรรมของเชื้อไวรัสก่อโรคทางเดินหายใจ ด้วยชุดน้ำยา FDTTM Respiratory pathogens 21 ร่วมกับการควบคุมคุณภาพด้วย Positive Control และ Negative Control เปรียบเทียบผลการตรวจกับผลการตรวจแบบ Real-time RT PCR ปกติ ผลการวิจัย ผลการศึกษาจากการตรวจวินิจฉัยเชื้อไวรัสไข้หวัดใหญ่และอาร์เอสวี ด้วยเทคนิค Multiplex Real-time RT PCR ที่เตรียมขึ้น ให้ผลตรงกับผลการตรวจจากวิธี Real-time RT PCR ทั้ง 60 ตัวอย่าง สรุปและวิจารณ์ผล แสดงให้เห็นว่าการตรวจวินิจฉัยเชื้อไวรัสไข้หวัดใหญ่และอาร์เอสวี ด้วยเทคนิค Multiplex Real-time RT PCR ที่พัฒนาในห้องปฏิบัติการไวรัสวิทยา สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์การแพทย์ทหาร สามารถตรวจวินิจฉัยโรคติดเชื้อไวรัสก่อโรคทางเดินหายใจในสิ่งตัวอย่างได้อย่างถูกต้อง แม่นยำ และมีเชื่อถือได้ ลดระยะเวลาในการปฏิบัติงานการสอบสวนโรคติดเชื้อไวรัสก่อโรคทางเดินหายใจ มีความพร้อมในการรับมือกับอุบัติการณ์การระบาดของโรค ซึ่งจะช่วยเพิ่มความสามารถในการควบคุมอุบัติการณ์การระบาดของโรค สนับสนุนและให้ความร่วมมือแผนงานทางด้านสาธารณสุขของประเทศไทยในอนาคตต่อไป
Downloads
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
บทความในวารสารนี้อยู่ภายใต้ลิขสิทธิ์ของ กรมแพทย์ทหารบก และเผยแพร่ภายใต้สัญญาอนุญาต Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International (CC BY-NC-ND 4.0)
ท่านสามารถอ่านและใช้งานเพื่อวัตถุประสงค์ทางการศึกษา และทางวิชาการ เช่น การสอน การวิจัย หรือการอ้างอิง โดยต้องให้เครดิตอย่างเหมาะสมแก่ผู้เขียนและวารสาร
ห้ามใช้หรือแก้ไขบทความโดยไม่ได้รับอนุญาต
ข้อความที่ปรากฏในบทความเป็นความคิดเห็นของผู้เขียนเท่านั้น
ผู้เขียนเป็นผู้รับผิดชอบต่อเนื้อหาและความถูกต้องของบทความของตนอย่างเต็มที่
การนำบทความไปเผยแพร่ซ้ำในรูปแบบสาธารณะอื่นใด ต้องได้รับอนุญาตจากวารสาร
เอกสารอ้างอิง
Department of Disease Control. [Prevention of diseases and health hazards during the rainy season.] Nonthaburi: Ministry of Public Health; 2017. Thai.
Department of Disease Control. [Prevention of diseases and health hazards during the winter season in Thailand.] Nonthaburi: Ministry of Public Health; 2017. Thai.
Bureau of Epidemiology, Department of Disease Control. [Respiratory Syncytial Virus (RSV) infection]. Nonthaburi: Ministry of Public Health; 2023. Thai.
World Health Organization. WHO information for molecular diagnosis of influenza virus in humans update. Genewa: World Health Organization; 2011.
Palese P, Shaw ML. Orthomyxoviridae: the viruses and their replication. In: Knipe DM, eds. Field’s virology. Vol 2, DNA Viruses. Philadelphia: Lippincott William & Wilkins, 2007. P.1647-89.
Department of Disease Control (Thailand). Influenza A (Influenza) [Internet]. Nonthaburi: Ministry of Public Health; 2017 [cited 2025 Jun 5]. Available from: https://ddc.moph.go.th/disease_detail.php?d=20
Communicable Disease Epidemiology Group, Bureau of Epidemiology, Department of Disease Control. Influenza situation report in Thailand, 2023: Week 22 (May 28–June 3, 2023) [Internet]. Nonthaburi: Department of Disease Control; 2023 [cited 2025 Jun 10]. Available from: https://ddc.moph.go.th/uploads/ckeditor2//files/DOE_flu_22.2566.pdf
Pediatric Infectious Disease Society of Thailand. [Winter-related illnesses Part 1: Common cold and influenza]. [Internet]. 2023 [cited 2023 Jul 17]. Available from: https://www.pidst.or.th/A289.html
Jain H, Schweitzer JW, Justice NA. Respiratory Syncytial Virus Infection. [Updated 2023 Jun 20]. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2023 Jan-. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK459215/
Ryu SW, Suh IB, Ryu SM, Shin KS, Kim HS, Kim J, et al. Comparison of three rapid influenza diagnostic tests with digital readout systems and one conventional rapid influenza diagnostic test. J Clin Lab Anal. 2018;32(2):e22234.
Cruz AT, Demmler-Harrison GJ, Caviness AC, Buffone GJ, Revell PA. Performance of a rapid influenza test in children during the H1N1 2009 influenza a outbreak. Pediatrics. 2010 ;125(3):e645-50.
Linares M, Pérez-Tanoira R, Carrero A, Romanyk J, Pérez-García F, Gómez-Herruz P, et al. Panbio antigen rapid test is reliable to diagnose SARS-CoV-2 infection in the first 7 days after the onset of symptoms. J Clin Virol. 2020;133:104659.
Brümmer LE, Katzenschlager S, Gaeddert M, Erdmann C, Schmitz S, Bota M, et al. Accuracy of novel antigen rapid diagnostics for SARS-CoV-2: A living systematic review and meta-analysis. PLoS Med. 2021;18(8):e1003735.
Geris JM, Spector LG, Roesler M, Hernandez-Alvarado N, Blackstad M, Nelson HH, et al. High prevalence of asymptomatic CMV shedding in healthy children attending the minnesota state fair. J Clin Virol. 2022;148:105102.
Scohy A, Anantharajah A, Bodéus M, Kabamba-Mukadi B, Verroken A, Rodriguez-Villalobos H. Low performance of rapid antigen detection test as frontline testing for COVID-19 diagnosis. J Clin Virol. 2020;129:104455.
Chartrand C, Tremblay N, Renaud C, Papenburg J. Diagnostic Accuracy of Rapid Antigen Detection Tests for Respiratory Syncytial Virus Infection: Systematic Review and Meta-analysis. J Clin Microbiol. 2015;53(12):3738-49.
Malhotra B, Swamy MA, Reddy PV, Kumar N, Tiwari JK. Evaluation of custom multiplex real - time RT - PCR in comparison to fast - track diagnostics respiratory 21 pathogens kit for detection of multiple respiratory viruses. Virol J. 2016;13:91.
Kenmoe S, Tcharnenwa C, Monamele GC, Kengne CN, Ripa MN, Whitaker B, et al. Comparison of FTD® respiratory pathogens 33 and a singleplex CDC assay for the detectionof respiratory viruses: A study from Cameroon. Diagn Microbiol Infect Dis. 2019;94(3):236-42.
Sakthivel SK, Whitaker B, Lu X, Oliveira DB, Stockman LJ, Kamili S, et al. Comparison of fast-track diagnostics respiratory pathogens multiplex real-time RT-PCR assay with in-house singleplex assays for comprehensive detection of human respiratory viruses. J Virol Methods. 2012;185(2):259-66.
Centers for Disease Control and Prevention (CDC). CDC 2019-Novel Coronavirus (2019-nCoV) Real-Time RT-PCR Diagnostic Panel Instructions for Use. Atlanta: U.S. Department of Health and Human Services; 2020.
Fast Track Diagnostics. FTD™ Respiratory Pathogens 21 – Instructions for Use. Rev. B. Esch-sur-Alzette: Fast Track Diagnostics Luxembourg S.à.r.l.; 2019.
