ผลการใช้เซลล์ต้นกำเนิดมีเซนไคม์ต่อการหายของรอยวิการรอบรากฟันเทียมในสัตว์ทดลอง: การทบทวนวรรณกรรมอย่างเป็นระบบและการวิเคราะห์อภิมาน
คำสำคัญ:
รากฟันเทียม, เซลล์ต้นกำเนิดมีเซนไคม์, วิศวกรรมเนื้อเยื่อ, การวิเคราะห์อภิมานบทคัดย่อ
ภูมิหลัง : เป้าหมายของการรักษารอยวิการรอบรากฟันเทียม คือหวังผลให้เกิดการเจริญทดแทนของเนื้อเยื่อรอบรากฟันเทียม และการคงสภาพของขบวนการกระดูกเชื่อมประสาน วิธีการรักษา มาตรฐานด้วยการปลูกถ่ายกระดูกตนเองยังมีข้อจำกัดหลายประการ จึงได้มีการนำเซลล์ต้นกำเนิดมีเซนไคม์โดยเทคนิควิศวกรรมเนื้อเยื่อ (tissue engineering) มาพัฒนาเพื่อใช้เป็นทางเลือ กในการกระตุ้น ให้เกิดการเจริญทดแทนของกระดูกและการคงสภาพของขบวนการ กระดูกเชื่อมประสานวัตถุประสงค์ : เพื่อตอบคำถามในเชิงปริมาณ ด้วยการวิจัยอย่างเป็นระบบว่าผลของการใช้เซลล์ต้นกำเนิดมี เซนไคม์ต่อการเจริญทดแทนของเนื้อเยื่อบริเวณรอยวิการรอบ รากฟันเทียมเป็นอย่างไรวิธีการ : สืบค้นงานวิจัยที่เกี่ยวข้องกับ การรักษาดังกล่าวจากฐานข้อมูล PubMed อย่างเป็นระบบ และ สืบค้นจาก Google scholar เลือกเฉพาะบทความภาษาอังกฤษ หรือภาษาไทย ตั้งแต่ปี ค.ศ. 2000 ถึงเดือนพฤษภาคม ปี ค.ศ. 2020ผล : บทความที่ได้รับการยอมรับมี 12 บทความที่เป็นการทดลอง ที่มีการควบคุมในสัตว์ทดลอง ทั้ง 12 บทความถูกนำมาวิเคราะห์ อภิมาน โดยรวบรวมผลลัพธ์ของปริมาณการสร้างใหม่ของกระดูก เบ้าฟัน และ/ หรือ การสร้างใหม่ของกระดูกที่สัมผัสกับรากฟัน เทียมโดยพิจารณาจากลักษณะทางจุลวิทยา โดยนำข้อมูลมาเทียบ กับกลุ่มควบคุมที่ไม่มีการใช้เซลล์ต้นกำเนิด จากนั้นนำมาหาค่า standard mean difference (SMD) ที่ช่วงความเชื่อมั่น 95% ผลการวิเคราะห์พบว่า กลุ่มที่ใช้เซลล์ต้นกำเนิดมีเซนไคม์สามารถ สร้างกระดูกเบ้าฟันได้มากกว่าในกลุ่มควบคุม (SMD = 2.683; 95% CI = 1.580 – 3.786, p = 0.000) และสามารถสร้างกระดูก ที่สัมผัสกับรากฟันเทียมได้มากกว่าในกลุ่มควบคุม (SMD = 2.592; 95% CI = 1.363 – 3.821, p = 0.000) แต่ข้อมูลขาดความ เป็นเนื้อเดียวกันระดับระดับสูง (I2=80.4%, I2=83.5%)สรุป : การ วิเคราะห์นี้สนับสนุนว่าการใช้เซลล์ต้นกำเนิดมีเซนไคม์มีแนวโน้ม ให้เกิดการเจริญทดแทนของเนื้อเยื่อบริเวณรอยวิการรอบรากฟัน เทียมในสัตว์ทดลอง อย่างไรก็ตามเนื่องจากยังมีการศึกษาที่มีจำนวนน้อย จำนวนกลุ่มตัวอย่างมีไม่มากนักและยังมีอคติอยู่บ้าง ดังนั้นจึงมี ความจำเป็นที่จะต้องมีการศึกษาในทางคลินิกที่เป็นการทดลองแบบ สุ่มและมีกลุ่มควบคุมที่มีจำนวนมากขึ้นและมีคุณภาพสูงต่อไป เพื่อประเมินประสิทธิภาพของการใช้เซลล์ต้นกำเนิดเพื่อการสร้าง ของเนื้อเยื่อบริเวณรอยวิการรอบรากฟันเทียม
เอกสารอ้างอิง
Pjetursson BE, Karoussis I, Bürgin W, Brägger U, Lang NP. Patients’ satisfaction following implant therapy. A 10-year prospective cohort study. Clin Oral Implants Res 2005;16:185–93.
Albrektsson T, Zarb G, Worthington P, Eriksson AR. The long-term efficacy of currently used dental implants: a review and proposed criteria of success. Int J Oral Maxillofac Implants 1986;1:11–25.
Chiapasco M, Zaniboni M. Clinical outcomes of GBR procedures to correct peri-implant dehiscences and fenestrations: a systematic review. Clin Oral Implants Res2009; 20 Suppl 4:113–23.
Polyzois I, Renvert S, Bosshardt DD, Lang NP, Claffey N. Effect of Bio-Oss on osseointegration of dental implants surrounded by circumferential bone defects of different dimensions: an experimental study in the dog.Clin Oral Implants Res 2007;18:304–10.
Heitz-Mayfield LJA, Mombelli A. The therapy of peri-implantitis: a systematic review. Int J Oral Maxillofac Implants 2014;29:325–45.
Kao ST, Scott DD. A review of bone substitutes. Oral Maxillofac Surg Clin North Am 2007; 19:513–521.
Nkenke E, Neukam FW. Autogenous bone harvesting and grafting in advanced jaw resorption: morbidity,resorption and implant survival. Eur J Oral Implantol 2014;7 Suppl 2:S203-17.
Langer R, Vacanti JP. Tissue engineering. Science 1993;260:920–6.
Nishimura M, Takase K, Suehiro F, Murata H. Candidates cell sources to regenerate alveolar bone from oral tissue. Int J Dent 2012;2012:857192.
Higgins JP, Altman DG, Gotzsche PC, Juni P, Moher D, Oxman AD, et al. The Cochrane Collaboration’s tool for assessing risk of bias in randomised trials. BMJ 2011;343:1-9.
Han X, Liu H, Wang D, Su F, Zhang Y, Zhou W, et al. Alveolar bone regeneration around immediate implants using an injectable nHAC/CSH loaded with autogenic blood-acquired mesenchymal progenitor cells: an experimental study in the dog mandible.Clin Implant Dent Relat Res 2013;15:390–401.
Hao PJ, Wang ZG, Xu QC, Xu S, Li ZR, Yang PS, et al. Effect of umbilical cord mesenchymal stem cell in peri-implant bone defect after immediate implant: an experiment study in beagle dogs. Int J Clin Exp Pathol 2014;7:8271–8.
Xu L, Sun X, Bai J, Jiang L, Wang S, Zhao J, et al.Reosseointegration Following Regenerative Therapy of Tissue-Engineered Bone in a Canine Model of Experimental Peri-Implantitis. Clin Implant Dent Relat Res 2016;18:379–91.
Ding L, Tang S, Liang P, Wang C, Zhou PF, Zheng L. Bone Regeneration of Canine Peri-implant Defects Using Cell Sheets of Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells and Platelet-Rich Fibrin Membranes. J Oral Maxillofac Surg 2019; 77:499–514.
Wang L, Zou D, Zhang S, Zhao J, Pan K, Huang Y. Repair of bone defects around dental implants with bone morphogenetic protein/fibroblast growth factor-loaded porous calcium phosphate cement: a pilot study in a canine model. Clin Oral Implants Res 2011;22:173–81.
Ribeiro FV, Suaid FF, Ruiz KG, Rodrigues TL, Carvalho MD, Nociti FH Jr, et al. Effect of autologous bone marrow-derived cells associated with guided bone regeneration or not in the treatment of peri-implant defects.Int J Oral Maxillofac Surg 2012;41:121–7.
Zou D, He J, Zhang K, Dai J, Zhang W, Wang S, et al. The bone-forming effects of HIF-1α-transduced BMSCs promote osseointegration with dental implant in canine mandible. PloS One 2012;7:e32355.
Yun JH, Han SH, Choi SH, Lee MH, Lee SJ, Song SU, et al.Effects of bone marrow-derived mesenchymal stem cells and platelet-rich plasma on bone regeneration for osseointegration of dental implants: preliminary study in canine three-wall intrabony defects. J Biomed Mater Res B Appl Biomater 2014;102:1021–30.
Xu L, Zhang W, Lv K, Yu W, Jiang X, Zhang F. Peri-Implant Bone Regeneration Using rhPDGF-BB, BMSCs, and β-TCP in a Canine Model. Clin Implant Dent Relat Res 2016;18:241–52.
Higgins JPT, Thompson SG, Deeks JJ, Altman DG. Measuring inconsistency in meta-analyses. BMJ 2003;327:557–60.
Park SY, Kim KH, Gwak EH, Rhee SH, Lee JC, Shin SY, et al. Ex vivo bone morphogenetic protein 2 gene delivery using periodontal ligament stem cells for enhanced re-osseointegration in the regenerative treatment of peri-implantitis. J Biomed Mater Res A 2015;103:38–47.
Mizuno D, Kagami H, Mizuno H, Mase J, Usami K, Ueda M. Bone regeneration of dental implant dehiscence defects using a cultured periosteum membrane. Clin Oral Implants Res 2008;19:289–94.
Misawa MYO, Huynh-Ba G, Villar GM, Villar CC. Efficacy of stem cells on the healing of peri-implant defects:systematic review of preclinical studies. Clin Exp Dent Res 2016;2:18–34.
Aerssens J, Boonen S, Lowet G, Dequeker J. Interspecies differences in bone composition, density, and quality: potential implications for in vivo bone research. Endocrinology 1998;139:663–70.
Muschler GF, Raut VP, Patterson TE, Wenke JC, Hollinger JO. The design and use of animal models for translational research in bone tissue engineering and regenerative medicine. Tissue Eng Part B Rev 2010;16:123-45.
Ribeiro FV, Suaid FF, Ruiz KGS, Rodrigues TL, Carvalho MD,Nociti FH, et al. Peri-implant reconstruction using autologous periosteum-derived cells and guided bone regeneration. J Clin Periodontol 2010;37:1128–36.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
บทความที่ได้รับการตีพิมพ์เป็นลิขสิทธิ์ของกรมการแพทย์ กระทรวงสาธารณสุข
ข้อความและข้อคิดเห็นต่างๆ เป็นของผู้เขียนบทความ ไม่ใช่ความเห็นของกองบรรณาธิการหรือของวารสารกรมการแพทย์
