ผลของแอนโดรกราโฟไลด์ต่อการมีชีวิตรอดของเซลล์เบตาของตับอ่อนในภาวะที่มีน้ำตาลกลูโคสในระดับสูง
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
วัตถุประสงค์: เพื่อศึกษาความเข้มข้นและระยะเวลาของการได้รับแอนโดรกราโฟไลด์ ที่ไม่เป็นอันตรายต่อเซลล์เบตาของตับอ่อน (INS-1) และความเข้มข้นเหมาะสมที่สุดของแอนโดรกราโฟไลด์ที่สามารถป้องกันเซลล์เบตาของตับอ่อนจากการตายเพราะภาวะพิษจากน้ำตาลสูง (glucotoxicity) ได้
วิธีการศึกษา: ทดสอบความมีชีวิตรอด (viability) ของเซลล์ ด้วยวิธี MTT assay เทียบกับกลุ่มควบคุม ในกรณี 1) ภาวะที่มีน้ำตาลกลูโคสในระดับปกติ และได้รับแอนโดรกราโฟไลด์ 0.1-100 ไมโครโมล/ล. นาน 1-5 วัน และ 2) ภาวะที่มีน้ำตาลกลูโคสในระดับสูง (กลูโคส 40 มิลลิโมล/ล). และได้รับแอนโดรกราโฟไลด์ 0.1-10 ไมโครโมล/ล. นาน 3-5 วัน
ผลการศึกษา: ในภาวะที่มีน้ำตาลกลูโคสในระดับปกติ เซลล์ในแอนโดรกราโฟไลด์ 0.1-10 ไมโครโมล/ล. นาน 1-5 วัน มีค่าเฉลี่ยร้อยละความมีชีวิตรอดไม่แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติจากกลุ่มควบคุม และในภาวะที่มีน้ำตาลกลูโคสในระดับสูง พบว่าแอนโดรกราโฟไลด์ที่ความเข้มข้นและระยะเวลาที่ทดสอบ ไม่มีผลลดการตายจากภาวะที่มีน้ำตาลกลูโคสในระดับสูงได้
สรุป: ความเข้มข้นและระยะเวลาที่เหมาะสมของการได้รับแอนโดรกราโฟไลด์ในภาวะที่มีน้ำตาลกลูโคสในระดับปกติ อยู่ที่ไม่เกิน 10 ไมโครโมล/ล. สามารถให้ได้ถึงประมาณ 5 วัน ซึ่งจะยังไม่มีผลลดความมีชีวิตรอดของเซลล์เบตาของตับอ่อน แต่แอนโดรกราโฟไลด์ 0.1-10 ไมโครโมล/ล. ไม่มีผลต้านภาวะพิษจากน้ำตาลสูงในเซลล์เบตาของตับอ่อนได้
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เอกสารอ้างอิง
American Diabetes Association. Diagnosing diabetes and leaning about prediabetes. 2016;21(1):1-6. Available from: https://www.diabetes.org/pem-prediabetes-es.
เทพ หิมะทองคำ และคณะ. ความรู้เรื่องเบาหวานฉบับสมบูรณ์. กรุงเทพฯ: วิทยพัฒน์; 2550.
Porte D Jr: Banting lecture 1990. Beta-cells in type II diabetes mellitus. Diabetes. 1991;40:166-80.
You S, Zheng J, Chenan Y, Huang H. Research progress on the mechanism of beta-cell apoptosis in type 2 diabetes mellitus. Front Endocrinol. 2022;13:976465.
Marles RJ, Farnswoth NR. Antidiabetic plants and their active constituents. Phytomedicine. 1995;2(2):137-89.
พันธิตร์ มะลิสุวรรณ. สมุนไพรบำบัดโรคเบาหวาน. กรุงเทพฯ: ยูทิไลซ์; 2546
สถาบันวิจัยสมุนไพร กรมวิทยาศาสตร์การแพทย์. มาตรฐานสมุนไพรไทยฟ้าทะลายโจร. กรุงเทพฯ: องค์การสงเคราะห์ทหารผ่านศึก; 2542:42-54.
Hossain MS, Urbi Z, Sule A, Hafizur RKM. Andrographis paniculata (Burm. f.) Wall. ex Nees: A review of ethnobotany, phytochemistry, and pharmacology. Sci World J. 2014;2014:1-28.
Santos-Neto LLD, de Vilhena Toledo MA, Souza PM, de Souza GA. The use of herbal medicine in Alzheimer's disease – a systematic review. Evid Based Complement Alternat Med. 2006;3:441-5.
Akhtar MT, Sarib MSBM, Ismail IS, Abas F, Ismail A, Lajis NH, et al. Anti-diabetic activity and metabolic changes induced by Andrographis paniculata plant extract in obese diabetic rats. Molecules. 2016;21(8):1026.
Zhang Z, Jiang J, Yu P, Zeng X, Larrick JW, Wang Y. Hypoglycemic and beta cell protective effects of andrographolide analogue for diabetes treatment. J Transl Med. 2009;7:62.
Merglen A, Theander S, Rubi B, Chaffard G, Wollheim CB, Maechler P. Glucose Sensitivity and Metabolism-Secretion CouplingStudied during Two-Year Continuous Culture in INS-1E Insulinoma Cells Endocrinology. Endocrinology. 2004;145(2):667-78
Hanchang W, Semprasert N, Thawornchai L,Yenchitsomanus P, Kooptiwut S. Testosterone Protects Against Glucotoxicity-Induced Apoptosis of Pancreatic -Cells (INS-1) and Male Mouse Pancreatic Islets. 2013;154(11):4058–67
Liang Z, Du E, Xu L, Sun Y, Zhang G, Yu P, Wang Y. Synthesis and preliminary biologic activity evaluation of nitric oxide-releasing andrographolide derivatives in RIN-m cells. Chem Pharm Bull. 2014;62(6):519–23.
Mosmann T. Rapid colorimetric for cellular growth and survival: Application to proliferation and cytotoxicity assay. J Immuno Methods. 1983;65:55-63.
นฤพงศ์ ภูนิคม, ภาคภูมิ เขียวละม้าย, ศิริกุล มะโนจันทร์, ชัยรัตน์ ตัณทราวัฒน์พันธ์, ดวงรัตน์ ตันติกัลยาภรณ์. ผลของสารแอนโดรกราโฟไลด์ต่อการอยู่รอดและการแบ่งตัวของเซลล์ต้นกำเนิดมีเซนไคม์ที่แยกจากไขกระดูกของมนุษย์. ธรรมศาสตร์เวชสาร. 2561;18(1):93-103.
Songvut P, Rangkadilok N, Pholphana N, Suriyo T, Panomvana D, Puranajoti P, et al. Comparative pharmacokinetics and safety evaluation of high dosage regimens of Andrographis paniculata aqueous extract after single and multiple oral administration in healthy participants. Front Phamacol. 2023;14:1230401.
Panossian A, Hovhannisyan A, Mamikonyan G, Abrabamian H, Hambardzumyan E, Gabrielian E, et al. Pharmacokinetic and oral bioavailability of andrographolide from Andrographis paniculata fixed combination Kan Jang in rats and human. Phytomedicine. 2000;7(5):351-64.
Wanaratna K, Leethong P, Inchai N, Chueawiang W, Sriraksa P, Tabmee A, et al. Efficacy and safety of Andrographis paniculata extract in patients with mild COVID-19: a randomized controlled trial. Arch Intern Med Res. 2022;5(3):423-7.
Al Batran R, Al-Bayaty F, Mazen M, Al-Obaidi J, Abdulla MA. Acute toxicity and the effect of andrographolide on Porphyromonas gingivalis-induced hyperlipidemia in rats. BioMed Res Int. 2013;2013:594012.
Kijsanayotin P, Chaichantipayuth C. Hepatoprotective effect of Andrographis paniculata and andrographolide against carbontetrachloride. Thai J Pharm Sci. 1992;16(4):301-7.
Yan G, Zhou H, Wang Y, Zhong Y, Tan Z, Wang Y, et al. Protective effects of andrographolide analogue AL-1 on ROS-induced RIN-mb cell death by inducing ROS generation. PLoS One. 2013;8(6):e63656.
Kanokkangsadal P, Mingmalairak C, Mukkasombat N, Kuropakornpong P, Worawattananutai P, Khawcharoenporn T, et al. Andrographis paniculata extract versus placebo in the treatment of COVID-19: a double-blinded randomized control trial. Res Pharm Sci. 2023;18(6):592-603.
Oh JY, Kim YH, LS, Lee YN, Go HS, Hwang DW, et a. The outcomes and quality of pancreatic islet cells isolated from surgical specimens for research on diabetes mellitus. Cell. 2022;11:2335.
Karimova MV, Gvazava IG, Vorotelyak EA. Overcoming the limitations of stem cell-derived beta cells. Biomolecules. 2012;12:810.
