การป้องกันแสงอาหารทางหลอดเลือดดำสำหรับทารกเกิดก่อนกำหนด

ผู้แต่ง

  • นีรชา พลอินทร์ ฝ่ายเภสัชกรรม โรงพยาบาลสงขลานครินทร์ คณะแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์
  • ฐิติมา ด้วงเงิน ฝ่ายเภสัชกรรม โรงพยาบาลสงขลานครินทร์ คณะแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์

คำสำคัญ:

อาหารทางหลอดเลือดดำ, อิมัลชันไขมันทางหลอดเลือดดำ, การป้องกันแสง, ทารกเกิดก่อนกำหนด, ภาวะเครียดออกซิเดชัน, สารอนุมูลอิสระ

บทคัดย่อ

อาหารทางหลอดเลือดดำเป็นแหล่งพลังงานและสารอาหารที่สำคัญต่อการดำรงชีวิตของทารกเกิดก่อนกำหนดที่เจ็บป่วยหรือมีข้อจำกัดในการได้รับอาหารทางปาก ทารกเกิดก่อนกำหนดจำเป็นต้องได้รับโภชนาการที่เหมาะสมในรูปสารอาหารทางหลอดเลือดดำเพื่อให้การเจริญเติบโตเป็นไปอย่างปกติในช่วงแรกของชีวิต อย่างไรก็ตามผลิตภัณฑ์อาหารทางหลอดเลือดดำชนิดต่าง ๆ อาจมีสารอนุมูลอิสระปนมาโดยไม่ตั้งใจ สารอนุมูลอิสระดังกล่าวเกิดจากสารบางชนิดในอาหารทางหลอดเลือดดำไวต่อปฏิกิริยาเมื่อโดนกระตุ้นด้วยแสง อย่างไรก็ตามความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระของทารกเกิดก่อนกำหนดมีน้อยเมื่อเทียบกับระดับของอนุมูลอิสระที่เกิดจากโรคและการรักษา หลักฐานทางวิชาการในปัจจุบันพบความสัมพันธ์ของอนุมูลอิสระที่เพิ่มขึ้นในอาหารทางหลอดเลือดดำที่ไม่ได้รับการป้องกันแสงกับภาวะเครียดออกซิเดชันส่งผลให้เกิดภาวะแทรกซ้อนในทารกเกิดก่อนกำหนด เช่น โรคปอดเรื้อรัง ภาวะลำไส้อักเสบเน่าตาย และโรคจอประสาทตาผิดปกติในทารกเกิดก่อนกำหนด การป้องกันอาหารทางหลอดเลือดดำจากแสงสามารถลดอุบัติการณ์ของภาวะแทรกซ้อนและอัตราเสียชีวิตในทารกเกิดก่อนกำหนด ดังนั้น สมาคมโภชนาการต่าง ๆ ประกอบด้วย American Society for Parenteral and Enteral Nutrition (ASPEN), European Society of Paediatric Gastroenterology, Hepatology and Nutrition (ESPGHAN), และ European Society for Clinical Nutrition and Metabolism (ESPEN) รวมถึงแนวเวชปฏิบัติการให้อาหารทางหลอดเลือดดำในทารกและเด็กจากสมาคมโภชนาการเด็กแห่งประเทศไทยและราชวิทยาลัยกุมารแพทย์แห่งประเทศไทย พ.ศ. 2564 แนะนำการป้องกันอาหารทางหลอดเลือดดำไม่ให้โดนแสงเพื่อลดการเกิดอนุมูลอิสระและการสลายของวิตามิน การป้องกันแสงควรทำในทุกกระบวนการตั้งแต่การผลิต การขนส่ง และการบริหารอาหารทางหลอดเลือดดำให้แก่ผู้ป่วย การปฏิบัติตามคำแนะนำนับเป็นความท้าทายภายใต้ข้อจำกัดของทรัพยากร

References

SR W. Global burden of preterm birth. Int J Gynecol Obstet. 2020;150(1):31-3.

Cao G, Liu J, Liu M. Global, regional, and national incidence and mortality of neonatal preterm birth, 1990-2019. JAMA Pediatr. 2022;176(8):787-96.

van Goudoever JB, van den Akker CHP. Parenteral nutrition for critically ill term and preterm neonates: a commentary on the 2021 European Society for Paediatric Gastroenterology, Hepatology and Nutrition Position Paper. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2021;73(2):137-8.

Robinson DT, Ayers P, Fleming B, Gura KM, Gutsul L, Michalski A, et al. Recommendations for photoprotection of parenteral nutrition for premature infants: An ASPEN position paper. Nutr Clin Pract. 2021;36(5):927-41.

Prathik BH, Aradhya AS, Sahoo T, Saini SS. Neonatal total parenteral nutrition: clinical implications from recent NICE guidelines. Indian Pediatr. 2021;58(1):67-70.

Lavoie JC, Chessex P. Parenteral nutrition and oxidant stress in the newborn: a narrative review. Free Radic Biol Med. 2019;142:155-67.

Saugstad OD. Mechanisms of tissue injury by oxygen radicals: implications for neonatal disease. Acta Paediatr. 1996;85(1):1-4.

Ferrante G, Carota G, Li Volti G, Giuffre M. Biomarkers of oxidative stress for neonatal lung disease. Front Pediatr. 2021;9:618867.

Deshpande G, Cai W. Use of lipids in neonates requiring parenteral nutrition. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2020;44 (suppl S1):S45-S54.

Chessex P, Laborie S, Nasef N, Masse B, Lavoie JC. Shielding parenteral nutrition from light improves survival rate in premature infants. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2017;41(3):378-83.

Neuzil J, Darlow BA, Inder TE, Sluis KB, Winterbourn CC, Stocker R. Oxidation of parenteral lipid emulsion by ambient and phototherapy lights: potential toxicity of routine parenteral feeding. J Pediatr. 1995;126:785-90.

Lavoie JC, Belanger S, Spalinger M, Chessex P. Admixture of a multivitamin preparation to parenteral nutrition: the major contributor to in vitro generation of peroxides. Pediatrics. 1997;99:E6.

Laborie S, Lavoie JC, Pineault M, Chessex P. Contribution of multivitamins, air, and light in the generation of peroxides in adult and neonatal parenteral nutrition solutions. Ann Pharmacother. 2000;34(4):440-5.

Elremaly W, Mohamed I, Rouleau T, Lavoie JC. Adding glutathione to parenteral nutrition prevents alveolar loss in newborn Guinea pig. Free Radic Biol Med. 2015;87:274-81.

Miloudi K, Comte B, Rouleau T, Montoudis A, Levy E, Lavoie JC. The mode of administration of total parenteral nutrition and nature of lipid content influence the generation of peroxides and aldehydes. Clin Nutr. 2012;31(4):526-34.

Lavoie JC, Rouleau T, Chessex P. Interaction between ascorbate and light-exposed riboflavin induces lung remodeling. J Pharmacol Exp Ther. 2004;311(2):634-9.

Lavoie JC, Mohamed I, Nuyt AM, Elremaly W, Rouleau T. Impact of SMOFLipid on pulmonary alveolar development in newborn Guinea pigs. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2018;42(8):1314-21.

Elremaly W, Mohamed I, Mialet-Marty T, Rouleau T, Lavoie JC. Ascorbylperoxide from parenteral nutrition induces an increase of redox potential of glutathione and loss of alveoli in newborn Guinea pig lungs. Redox Biol. 2014;2:725-31.

Chessex P, Harrison A, Khashu M, Lavoie JC. In preterm neonates, is the risk of developing bronchopulmonary dysplasia influenced by the failure to protect total parenteral nutrition from exposure to ambient light? J Pediatr. 2007;151(2):213-4.

Laborie S, Denis A, Dassieu G, Bedu A, Tourneux P, Pinquier D, et al. Shielding parenteral nutrition solutions from light: a randomized controlled trial. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2015;39(6):729-37.

Stritzke A, Turcot V, Rouleau T, Lavoie JC, Chessex P. Influence of shielding TPN from photooxidation on the number of early blood transfusions in ELBW premature neonates. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2012;55(4):398-402.

Bassiouny MR, Almarsafawy H, Abdel-Hady H, Nasef N, Hammad TA, Aly H. A randomized controlled trial on parenteral nutrition, oxidative stress, and chronic lung diseases in preterm infants. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2009;48(3):363-9.

Chessex P, Watson C, Kaczala GW, Rouleau T, Lavoie ME, Friel J, et al. Determinants of oxidant stress in extremely low birth weight premature infants. Free Radic Biol Med. 2010;49(9):1380-6.

Sherlock R, Chessex P. Shielding parenteral nutrition from light: does the available evidence support a randomized, controlled trial? Pediatrics. 2009;123(6):1529-33.

Khashu M, Harrison A, Lalari V, Lavoie JC, Chessex P. Impact of shielding parenteral nutrition from light on routine monitoring of blood glucose and triglyceride levels in preterm neonates. Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed. 2009;94:F111-5.

Laborie S, Lavoie JC, Chessex P. Increased urinary peroxides in newborn infants receiving parenteral nutrition exposed to light. J Pediatr. 2000;136(5):628-32.

Lapillonne A, Fidler Mis N, Goulet O, van den Akker CHP, Wu J, Koletzko B, et al. ESPGHAN/ESPEN/ESPR/CSPEN guidelines on pediatric parenteral nutrition: Lipids. Clin Nutr. 2018;37:2324-36.

Puntis J, Hojsak I, Ksiazyk J, nutrition EEECwgopp. ESPGHAN/ESPEN/ESPR/CSPEN guidelines on pediatric parenteral nutrition: Organisational aspects. Clin Nutr. 2018;37:2392-400.

สมาคมโภชนาการเด็กแห่งประเทศไทย ราชวิทยาลัยกุมารแพทย์แห่งประเทศไทย และสมาคมกุมารแพทย์แห่งประเทศไทย. แนวเวชปฏิบัติสำหรับการให้อาหารทางหลอดเลือดดำในทารกและเด็ก พ.ศ. 2564. สืบค้น 10 ตุลาคม 2565 จาก https://www.thaipediatrics.org/wp-content/uploads/2022/04/media-20210923064524.pdf.

Steger PJ, Muhlebach SF. Lipid peroxidation of intravenous lipid emulsions and all-in-one admixtures in total parenteral nutrition bags: the influence of trace elements. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2000;24(1):37-41.

Picaud JC, Steghens JP, Auxenfans C, Barbieux A, Laborie S, Claris O. Lipid peroxidation assessment by Malondialdehyde measurement in parenteral nutrition solutions for newborn infants: a pilot study. Acta Paediatr. 2004;93(2):241-5.

Jalabert A, Grand A, Steghens JP, Barbotte E, Pigue C, Picaud JC. Lipid peroxidation in all-in-one admixtures for preterm neonates: impact of amount of lipid, type of lipid emulsion and delivery condition. Acta Paediatr. 2011;100(9):1200-5.

Inder TE, Carr AC, Winterbourn CC, Austin NC, Darlow BA. Vitamin A and E status in very low birth weight infants: development of an improved parenteral delivery system. J Pediatr. 1995;126(1):128-31.

Silvers KM, Sluis KB, Darlow BA, McGill F, Stocker R, Winterbourn CC. Limiting light-induced lipid peroxidation and vitamin loss in infant parenteral nutrition by adding multivitamin preparations to Intralipid. Acta Paediatr. 2001;90(3):242-9.

Hamer RD, Dobson V, Mayer MJ. Absolute thresholds in human infants exposed to continuous illumination. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1984;25(4):381-8.

Glass P. Light and the developing retina. Doc Ophthalmol. 1990;74(3):195-203.

Mosa A, Nehad N. Light-exposed parenteral nutrition solutions and implications for preterm infants. Diet and Nutrition in Critical Care. 2014.

สมาคมไฟฟ้าแสงสว่างแห่งประเทศไทย. คู่มือแนวทางการออกแบบการส่องสว่างภายในอาคาร. กรุงเทพฯ: สมาคมไฟฟ้าแสงสว่างแห่งประเทศไทย; 2559.

Brawley V, Bhatia J, Karp WB. Hydrogen peroxide generation in a model paediatric parenteral amino acid solution. Clin Sci (Lond). 1993;85(6):709-12.

Silvers KM, Darlow BA, Winterbourn CC. Lipid peroxide and hydrogen peroxide formation in parenteral nutrition solutions containing multivitamins. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2001;25(1):14-7.

Karthigesu K, Bertolo RF, Brown RJ. Parenteral nutrition and oxidant load in neonates. Nutrients. 2021;13(8):2631.

Del Rio D, Stewart AJ, Pellegrini N. A review of recent studies on Malondialdehyde as toxic molecule and biological marker of oxidative stress. Nutr Metab Cardiovasc Dis. 2005;15(4):316-28.

Bronsky J, Campoy C, Braegger C, nutrition EEECwgopp. ESPGHAN/ESPEN/ESPR/CSPEN guidelines on pediatric parenteral nutrition: Vitamins. Clin Nutr. 2018;37(6 Pt B):2366-78.

Bhatia J, Moslen MT, Haque AK, McCleery R, Rassin DK. Total parenteral nutrition-associated alterations in hepatobiliary function and histology in rats: is light exposure a clue? Pediatr Res. 1993;33(5):487-92.

Elremaly W, Rouleau T, Lavoie JC. Inhibition of hepatic methionine adenosyltransferase by peroxides contaminating parenteral nutrition leads to a lower level of glutathione in newborn Guinea pigs. Free Radic Biol Med. 2012;53(12):2250-5.

Inder TE, Darlow BA, Sluis KB, Winterbourn CC, Graham P, Sanderson KJ, et al. The correlation of elevated levels of an index of lipid peroxidation (MDA-TBA) with adverse outcome in the very low birthweight infant. Acta Paediatr. 1996;85(9):1116-22.

Khashu M, Harrison A, Lalari V, Gow A, Lavoie JC, Chessex P. Photoprotection of parenteral nutrition enhances advancement of minimal enteral nutrition in preterm infants. Semin Perinatol. 2006;30(3):139-45.

Laborie S, Lavoie JC, Pineault M, Chessex P. Protecting solutions of parenteral nutrition from peroxidation. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 1999;23(2):104-8.

Grand A, Jalabert A, Mercier G, Florent M, Hansel-Esteller S, Cambonie G, et al. Influence of vitamins, trace elements, and iron on lipid peroxidation reactions in all-in-one admixtures for neonatal parenteral nutrition. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2011;35(4):505-10.

Ray S. NICE guideline review: Neonatal parenteral nutrition (NG154). Arch Dis Child Educ Pract Ed. 2021;106(5):292-5.

Hoff DS, Michaelson AS. Effects of light exposure on total parenteral nutrition and its implications in the neonatal population. J Pediatr Pharmacol Ther. 2009;14(3):132-4.

Downloads

เผยแพร่แล้ว

2023-12-25

ฉบับ

บท

บทความทบทวนวิชาการ