พฤกษเคมีเบื้องต้น ปริมาณฟีนอลิกรวม และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของใบขนุน ขี้เหล็ก และไชยา

พฤกษเคมีเบื้องต้นและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของใบขนุน ขี้เหล็ก และไชยา

ผู้แต่ง

  • วราภรณ์ มหาทรัพย์ สาขาวิทยาศาสตร์การแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ วิทยาลัยนครราชสีมา
  • วชิรวิชญ์ พามาดี สาขาวิทยาศาสตร์การแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ วิทยาลัยนครราชสีมา
  • อภัสรา คตชัง สาขาวิทยาศาสตร์การแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ วิทยาลัยนครราชสีมา
  • ศิริประภา สุดบุรินทร์ สาขาวิทยาศาสตร์การแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ วิทยาลัยนครราชสีมา
  • ณัฐกานต์ สาพันธุ์ สาขาวิทยาศาสตร์การแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ วิทยาลัยนครราชสีมา
  • ปาริชาติ อ้นองอาจ สาขาวิทยาศาสตร์การแพทย์ คณะสหเวชศาสตร์ วิทยาลัยนครราชสีมา

คำสำคัญ:

ขนุน, ขี้เหล็ก, ไชยา, สารต้านอนุมูลอิสระ, ฟีนอลิกรวม

บทคัดย่อ

        พืชสมุนไพรขนุน (Artocarpus heterophyllus) ขี้เหล็ก (Cassia siamea) และไชยา (Cnidoscolus aconitifolius) มีการใช้ทางยาพื้นบ้านและเป็นแหล่งสารพฤกษเคมีที่สําคัญโดยเฉพาะสารฟีนอลิกซึ่งมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ การศึกษาพฤกษเคมีเบื้องต้นและปริมาณฟีนอลิกรวมในพืชเหล่านี้ จึงมีความจําเป็นเพื่อประเมินศักยภาพในการนําไปใช้ประโยชน์ทางการแพทย์และพัฒนาผลิตภัณฑ์สมุนไพรที่ปลอดภัยและมีประสิทธิภาพ การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อทดสอบพฤกษเคมีเบื้องต้นและฤทธิ์ทางชีวภาพจากใบพืชสามชนิดนี้ เพื่อประเมินองค์ประกอบทางพฤกษเคมีทั้งในเชิงคุณภาพและเชิงปริมาณ รวมถึงศึกษาฤทธิ์ทางชีวภาพต้านอนุมูลอิสระ เพื่อทดสอบสารสําคัญกลุ่มแอลคาลอยด์ ฟลาโวนอยด์ แอนทราควิโนน คูมาริน ซาโปนิน แทนนิน โฟลบาแทนนิน เทอร์พีนอยด์ สเตียรอยด์ และคาร์ดิแอกไกลโคไซด์ นอกจากนี้การวิเคราะห์เชิงปริมาณของสารประกอบฟีนอลิกรวมโดยวิธี Folin-Ciocalteu รวมทั้งทดสอบฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH Assay ผลการศึกษาพบว่าสารสกัดจากใบขนุนและใบขี้เหล็กมีองค์ประกอบทางพฤกษเคมีมากถึง 8 กลุ่ม ขณะที่ใบไชยาตรวจพบเพียง 6 กลุ่ม เมื่อทดสอบเพื่อหาปริมาณสารประกอบฟีนอลิกรวม พบว่าใบขี้เหล็กมีปริมาณสูงสุด (0.89±0.004 mg GAE/g extract) รองลงมา คือ ใบขนุน (0.86±0.016 mg GAE/g extract) และต่ำที่สุด คือ ใบไชยา (0.49±0.009 mg GAE/g extract) ผลการทดสอบฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ พบว่าสารสกัดจากใบขนุนมีค่า IC50 ต่ำที่สุด คือ 0.77±0.289 mg/mL แสดงถึงศักยภาพการต้านอนุมูลอิสระสูงสุด รองลงมา คือ ใบไชยา 0.90±0.880 mg/mL และใบขี้เหล็ก 1.45±0.821 mg/mL การศึกษานี้แสดงถึงศักยภาพของพืชทั้งสามชนิดเป็นแหล่งสารต้านอนุมูลอิสระจากธรรมชาติ ซึ่งสามารถนําไปประยุกต์ใช้ในงานด้านผลิตภัณฑ์สุขภาพหรืออาหารเสริมต่อไปได้

เอกสารอ้างอิง

Balunas MJ, Kinghorn AD. Drug discovery from medicinal plants. Life Sci 2005; 78(5): 431–41.

Kim EJ, Park SY, Lee JY, Park JHY. Fucoidan present in brown algae induces apoptosis of human colon cancer cells. BMC Gastroenterol 2010; 10: 96. (11 pages).

Mahomoodally MF, Sreekeesoon DP. A quantitative ethnopharmacological documentation of natural pharmacological agents used by pediatric patients in Mauritius. Biomed Res Int 2014; 2014: 136757. (14 pages).

da Costa MP, Bozinis MCV, Andrade WM, Costa CR, da Silva AL, Alves de Oliveira CM, et al. Antifungal and cytotoxicity activities of the fresh xylem sap of Hymenaea courbaril L. and its major constituent fisetin. BMC Complement Altern Med 2014; 14: 245. (7 pages).

Lay MM, Karsani SA, Banisalam B, Mohajer S, Abd Malek SN. Antioxidants, phytochemicals, and cytotoxicity studies on Phaleria macrocarpa (Scheff.) Boerl seeds. Biomed Res Int 2014; 2014: 410184. (13 pages).

Fernando CD, Soysa P. Total phenolic, flavonoid contents, in-vitro antioxidant activities and hepatoprotective effect of aqueous leaf extract of Atalantia ceylanica. BMC Complement Altern Med 2014; 14: 395. (8 pages).

Miraloglu M, Kurutas EB, Ozturk P, Arican O. Evaluation of local trace element status and 8-iso-prostaglandin F2α concentrations in patients with Tinea pedis. Biol Proced Online 2016; 18: 1. (6 pages).

Al-Sayed E, El-Lakkany NM, Seif El-Din SH, Sabra ANA, Hammam OA. Hepatoprotective and antioxidant activity of Melaleuca styphelioides on carbon tetrachloride-induced hepatotoxicity in mice. Pharm Biol 2014; 52(12): 1581–90.

Kuri-García A, Chávez-Servín JL, Guzmán Maldonado SH. Phenolic profile and antioxidant capacity of Cnidoscolus chayamansa and Cnidoscolus aconitifolius: a review. J Med Plant Res 2017; 11(45): 713–27.

Ponrasu T, Suguna L. Efficacy of Annona squamosa L in the synthesis of glycosaminoglycans and collagen during wound repair in streptozotocin induced diabetic rats. Biomed Res Int 2014; 2014: 124352. (10 pages).

Oshimi S, Tomizawa Y, Hirasawa Y, Honda T, Ekasari W, Widyawaruyanti A, et al. Chrobisiamone A, a new bischromone from Cassia siamea and a biomimetic transformation of 5-acetonyl-7-hydroxy-2-methylchromone into cassiarin A. Bioorg Med Chem Lett 2008; 18(13): 3761–3.

Gomathi AC, Rajarathinam SX, Sadiq AM, Rajeshkumar S. Anticancer activity of silver nanoparticles synthesized using aqueous fruit shell extract of Tamarindus indica on MCF-7 human breast cancer cell line. J Drug Deliv Sci Technol 2020; 55: 101376.

Akter H, Rashid MM, Islam MS, Hossen MA, Rahman MA, Algheshairy RM, et al. Biometabolites of Tamarindus indica play a remarkable cardioprotective role as a functional food in doxorubicin-induced cardiotoxicity models. J Funct Foods 2022; 96: 105212. (13 pages).

Ko HH, Tsai YT, Yen MH, Lin CC, Liang CJ, Yang TH, et al. Norartocarpetin from a folk medicine Artocarpus communis plays a melanogenesis inhibitor without cytotoxicity in B16F10 cell and skin irritation in mice. BMC Complement Altern Med 2013; 13: 348. (12 pages).

Ayoola GA, Coker HA, Adesegun SA, Adepoju-Bello AA, Obaweya K, Ezennia EC, et al. Phytochemical screening and antioxidant activities of some selected medicinal plants used for malaria therapy in southwestern Nigeria. Trop J Pharm Res 2008; 7(3): 1019–24.

Singleton VL, Orthofer R, Lamuela-Raventós RM. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin–Ciocalteu reagent. Methods Enzymol 1999; 299: 152–78.

Harborne JB. Phytochemical methods: a guide to modern techniques of plant analysis. 3rd ed. London: Chapman and Hall; 1998.

Baliyan S, Mukherjee R, Priyadarshini A, Vibhuti A, Gupta A, Pandey RP, et al. Determination of antioxidants by DPPH radical scavenging activity and quantitative phytochemical analysis of Ficus religiosa. Molecules 2022; 27(4): 1326. (19 pages).

Utari A, Warly L. Tannin contents of jackfruit leaves (Artocarpus heterophyllus) extract and Moringa leaves (Moringa oleifera) extract as functional additive feed in ruminant livestock. IOP Conf Ser Earth Environ Sci 2021; 757(1): 012054. (6 pages).

Sinaga SP, Situmorang RFR, Singarimbun N, Lestari W, Gurning K. Determination of total phytochemical compounds from ethanol extract nangka (Artocarpus heterophyllus Lam.) leaves and antioxidant activity from North Sumatera, Indonesia. Rasayan J Chem 2023; 16(1): 19–23.

Tambunan IYB, Siringo-Ringo E, Butar-Butar MJ, Gurning K. GC-MS analysis of bioactive compounds and antibacterial activity of nangka leaves (Artocarpus heterophyllus Lam). Pharmacia 2023; 70(1): 67–72.

Tacbas EA, Sumaya NPD, Sumaya NH. In vitro antihelminthic activities of Artocarpus heterophyllus (Jackfruit) and Artocarpus camansi (Breadnut) leaf extracts on the model nematode, Caenorhabditis elegans. Pak J Nematol 2024; 42(2): 136–45.

del Baño MJ, Lorente J, Castillo J, BenaventeGarcía O, Marín MP, Del Río JA, et al. Flavonoid distribution during the development of leaves, flowers, stems, and roots of Rosmarinus officinalis. Postulation of a biosynthetic pathway. J Agric Food Chem 2004; 52(16): 4987–92.

Chew YL, Chan EWL, Tan PL, Lim YY, Stanslas J, Goh JK. Assessment of phytochemical content, polyphenolic composition, antioxidant and antibacterial activities of Leguminosae medicinal plants in Peninsular Malaysia. BMC Complement Altern Med 2011; 11: 12. (10 pages).

da Costa AM, da Cunha Leite MA, Farias AL, de Castro Cantuária P, Almeida SSM da S de. Phytochemical study of the leaves of Artocarpus heterophyllus Lam. In: II International Seven Multidisciplinary Congress. Seven Congress; 2023.

Alkali K, Hamza MM, Shehu MM, Abdulhamid MB, Audu H. Qualitative and quantitative phytochemical screening of aqueous, methanol, and hexane leaf extracts of Senna siamea. Sahel J Life Sci FUDMA 2025; 3(1): 328–36.

Ogunniran AO, Dauda OS, Rotimi D, Jegede FC, Falodun DJ, Adekunle PO. Nutritional, phytochemical, and antimicrobial properties of Senna siamea leaves. Toxicol Rep 2024; 13: 101793.

Dikwa KB, Alkali K, Ajibade GA, Magaji Y, Ige OT. Effects of methanol leaves extracts of Azadirachta indica (Juss.), Senna occidentalis (Linn) and Senna siamea (Lam) on the in vitro growth of Plasmodium falciparum (Laveran) trophozoites. Sahel J Life Sci FUDMA 2025; 3(1): 287–98.

Serafim C, Araruna ME, Júnior EA, Diniz M, Hiruma-Lima C, Batista L. A review of the role of flavonoids in peptic ulcer (2010–2020). Molecules 2020; 25(22): 5431. (32 pages).

Masyita A, Mustika Sari R, Dwi Astuti A, Yasir B, Rahma Rumata N, Emran TB, et al. Terpenes and terpenoids as main bioactive compounds of essential oils, their roles in human health and potential application as natural food preservatives. Food Chem X 2022; 13: 100217. (14 pages).

Redondo-Blanco S, Fernández J, LópezIbáñez S, Miguélez EM, Villar CJ, Lombó F. Plant phytochemicals in food preservation: antifungal bioactivity: a review. J Food Prot 2020; 83(1): 163–71.

Setiasih S, Anggraeny YN, Latifah E, Puspito S, Istiqomah N, Bakrie B, et al. Nutrient content, phytochemical profile and anti-methanogen potential of Chaya (Cnidoscolus aconitifolius) leaf extracts. IOP Conf Ser Earth Environ Sci 2024; 1362: 012037. (9 pages).

Yusuf A, Abubakar J, Lawal A. Phytochemicals screening and nutritional profile of Cnidoscolus aconitifolius leaves collected in Birnin Kebbi, Nigeria. Sch Int J Biochem 2022; 5(6): 85–9.

Panghal A, Shaji AO, Sajitharan D, Nain K, Garg MK, Chhikara N. Cnidoscolus aconitifolius: Nutritional, phytochemical composition and health benefits – a review. Bioact Compd Health Dis 2021; 4(11): 260–86.

Todorov L, Saso L, Kostova I. Antioxidant activity of coumarins and their metal complexes. Pharmaceuticals 2023; 16(5): 651. (26 pages).

Darkwah WK, Ao Y, Adinortey MB, Weremfo A, Abrokwah FK, Afriyie E. Total phenolic, flavonoid and alkaloid contents, oxidative DNA damage protective and antioxidant properties of methanol and aqueous extracts of Dissotis rotundifolia whole plant. Free Radic Antioxid 2018; 8(2): 82–8.

Pandey J, Jaishwal N, Jayswal M, Gupta DC, Dhakal B, Budean D, et al. Evaluation of antioxidant, xanthine oxidase-inhibitory, and antibacterial activity of Syzygium cumini Linn. seed extracts. Plants 2025; 14(3): 316. (22 pages).

Muhamad M, Ai Sze W, Zulkifli NS, Ab-Rahim S. Qualitative analysis on the phytochemical compounds and total phenolic content of Cissus hastata (Semperai) leaf extract. Int J Plant Biol 2022; 14(1): 53–62.

Noor NA, Islam M, Hamid N, Raseetha S. Phytochemical composition of jackfruit (Artocarpus heterophyllus) and Indian jujube (Ziziphus mauritiana) leaves extracted using different ethanol concentrations. J Sustain Sci Manag 2024; 19(9): 146–62.

Sreeja Devi PS, Kumar NS, Sabu KK. Phytochemical profiling and antioxidant activities of different parts of Artocarpus heterophyllus Lam. (Moraceae): a review on current status of knowledge. Futur J Pharm Sci 2021; 7(1): 30. (7 pages).

Kuti JO, Konuru HB. Antioxidant capacity and phenolic content in leaf extracts of tree spinach (Cnidoscolus spp.). J Agric Food Chem 2004; 52(1): 117–21.

García-Rodríguez RV, Gutiérrez-Rebolledo GA, Méndez-Bolaina E, Sánchez-Medina A, Maldonado-Saavedra O, Domínguez-Ortiz MÁ, et al. Cnidoscolus chayamansa Mc Vaugh, an important antioxidant, anti-inflammatory and cardioprotective plant used in Mexico. J Ethnopharmacol 2014; 151(2): 937–43.

Saeed N, Khan MR, Shabbir M. Antioxidant activity, total phenolic and total flavonoid contents of whole plant extracts Torilis leptophylla L. BMC Complement Altern Med 2012; 12(1): 221. (12 pages).

Clarke G, Ting KN, Wiart C, Fry J. High correlation of 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) radical scavenging, ferric reducing activity potential and total phenolics content indicates redundancy in use of all three assays to screen for antioxidant activity of extracts of plants from the Malaysian rainforest. Antioxidants 2013; 2(1): 1–10.

Babbar N, Oberoi HS, Uppal DS, Patil RT. Total phenolic content and antioxidant capacity of extracts obtained from six important fruit residues. Food Res Int 2011; 44(1): 391–6.

Rajurkar NS, Hande SM. Estimation of phytochemical content and antioxidant activity of some selected traditional Indian medicinal plants. Indian J Pharm Sci 2011; 73(2): 146–51.

Muflihah YM, Gollavelli G, Ling YC. Correlation study of antioxidant activity with phenolic and flavonoid compounds in 12 Indonesian indigenous herbs. Antioxidants 2021; 10(10): 1530. (15 pages).

ดาวน์โหลด

เผยแพร่แล้ว

24-09-2025

รูปแบบการอ้างอิง

1.
มหาทรัพย์ ว, พามาดี ว, คตชัง อ, สุดบุรินทร์ ศ, สาพันธุ์ ณ, อ้นองอาจ ป. พฤกษเคมีเบื้องต้น ปริมาณฟีนอลิกรวม และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของใบขนุน ขี้เหล็ก และไชยา: พฤกษเคมีเบื้องต้นและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของใบขนุน ขี้เหล็ก และไชยา. ว กรมวิทย พ [อินเทอร์เน็ต]. 24 กันยายน 2025 [อ้างถึง 5 กุมภาพันธ์ 2026];67(3):439-52. available at: https://he02.tci-thaijo.org/index.php/dmsc/article/view/276371

ฉบับ

ประเภทบทความ

นิพนธ์ต้นฉบับ (Original Articles)